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更新時間：2025-01-11 
瀏覽次數：831NADP-蘋果酸酶（Malic enzyme ，NADP-ME）試劑盒說明書
分光光度法 50 管/48 樣
ME 廣泛存在于微生物、培養細胞、動物和植物胞漿中，尤其在植物組織中活性較高。ME 催化蘋果
酸氧化脫羧的可逆反應，產生丙酮酸和CO2，以及伴隨NAD(P)+的還原反應，是蘋果酸代謝的關鍵酶。 ME 活性與生物合成和抗氧化密切相關。近年來植物 ME 活性測定較多，已經成為抗氧化研究的熱點。根據輔酶專一性和對底物特異性的不同，可將ME 分為NAD-ME(EC1.1.1.38)和NADP-ME(EC1.1.1.40)。
NADP-ME 催化NADP+還原成 NADPH，在 340nm 下測定NADPH 增加速率。
產品名稱 | BF6009-50T/48S | Storage |
提取液： | 60ml | 4℃ |
試劑一：液體 | 60ml | 4℃ |
試劑二：粉劑 | 1 瓶 | -20℃ |
試劑三：粉劑 | 1 瓶 | -20℃ |
說明書 | 一份 | |
試劑二：粉劑×1 瓶，-20℃保存； 臨用前加入 50ml 試劑一充分振蕩，溶解待用，用不完的試劑分裝后-20
度保存，禁止反復凍融。
試劑三：粉劑×1 瓶，-20℃保存；臨用前加入 6ml 蒸餾水充分振蕩，溶解待用，用不完的試劑分裝后-20
度保存，禁止反復凍融。
紫外分光光度計、水浴鍋、臺式離心機、可調式移液器、1 ml 石英比色皿和蒸餾水。
1、細菌、細胞或組織樣品的制備：
細菌或培養細胞：先收集細菌或細胞到離心管內，離心后棄上清；按照細菌或細胞數量（104 個）：提取液體積（ml）為 500~1000：1 的比例（建議 500 萬細菌或細胞加入 1ml 提取液），超聲波破碎細菌或細胞
（冰浴，功率 20％或 200W，超聲 3s，間隔 10s，重復 30 次）；14000g 4℃離心 10min，取上清，置冰上待測。
組織：按照組織質量（g）：提取液體積(ml)為 1：5~10 的比例（建議稱取約 0.1g 組織，加入 1ml 提取液），進行冰浴勻漿。14000g 4℃離心 10min，取上清，置冰上待測。
2、血清（漿）樣品：直接檢測。
1、分光光度計預熱 30min 以上，調節波長至 340nm，蒸餾水調零。
2、在 1ml 石英比色皿中加入 50μL 樣本和 850μL 試劑二，混勻，30℃孵育 5min，加入 100μL 試劑三，混勻后立即記錄 340nm 處初始吸光值A1 和 1min 后的吸光值A2，計算ΔA=A2-A1。
（1） 按樣本蛋白濃度計算：
單位的定義：每mg 組織蛋白每分鐘生成 1 nmol NADPH 定義為一個酶活力單位。
NADP-ME（nmo/min/mg prot）＝[ΔA×V 反總÷（ε×d）×109]÷(V 樣×Cpr) ÷T= 3215×ΔA÷Cpr
此法需要自行測定樣本蛋白質濃度。
（2） 按樣本鮮重計算：
單位的定義：每g 組織每分鐘生成 1 nmol NADPH 定義為一個酶活力單位。
NADP-ME（nmo/min/g 鮮重）＝[ΔA×V 反總÷（ε×d）×109]÷(W× V 樣÷V 樣總) ÷T =3215×ΔA÷W
（3） 按細菌或細胞密度計算：
單位的定義：每 1 萬個細菌或細胞每分鐘生成 1 nmol NADPH 定義為一個酶活力單位。
NADP-ME（nmo/min/104 cell）=[ΔA×V 反總÷（ε×d）×109]÷(500×V 樣÷V 樣總) ÷T =6.43×ΔA
V 反總：反應體系總體積，1×10-3 L；ε：NADPH 摩爾消光系數，6.22×103 L / mol /cm；d：比色皿光徑， 1cm；V 樣：加入樣本體積，0.1 ml；V 樣總：加入提取液體積，1 ml；T：反應時間，1 min；Cpr：樣本蛋白質濃度，mg/ml；W：樣本質量，g；500：細菌或細胞總數，500 萬。
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